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N° Cat.S7317
| Cibles apparentées | PI3K Akt mTOR GSK-3 ATM/ATR DNA-PK PDPK1 PTEN PP2A PDK |
|---|---|
| Autre AMPK Inhibiteurs | Dorsomorphin Dihydrochloride Dorsomorphin (Compound C) AICAR (Acadesine) A-769662 GSK621 Ex229 (Compound 991) Phenformin HCl BAY-3827 HTH-01-015 O-304 |
| Poids moléculaire | 496.99 | Formule | C25H29ClN6O3 |
Stockage (À partir de la date de réception) | |
|---|---|---|---|---|---|
| N° CAS | 1214265-58-3 | Télécharger le SDF | Stockage des solutions mères |
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| Synonymes | N/A | Smiles | CCC(=O)NC1=CC(=CC=C1)OC2=NC(=NC=C2Cl)NC3=C(C=C(C=C3)N4CCN(CC4)C)OC | ||
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In vitro |
DMSO
: 10 mg/mL
(20.12 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Étape 1 : Entrez les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant lexpérience)
Étape 2 : Entrez la formulation in vivo (Ceci nest que le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter dabord sil ny a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)
Résultats du calcul :
Concentration de travail : mg/ml;
Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter dabord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )
Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuiteμL PEG300, mélanger et clarifier, ajouter ensuiteμL Tween 80, mélanger et clarifier, ajouter ensuite μL ddH2O, mélanger et clarifier.
Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuite μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.
Remarque : 1. Assurez-vous que le liquide est clair avant dajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous dajouter le(s) solvant(s) dans lordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue lors de lajout précédent est une solution claire avant de procéder à lajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.
| Targets/IC50/Ki |
NUAK1
(Cell-free assay) 20 nM
NUAK2
(Cell-free assay) 100 nM
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| In vitro |
Dans les cellules HEK-293 exprimant la NUAK1 de type sauvage, WZ4003 (3–10 μM) supprime nettement la phosphorylation de MYPT1 médiée par NUAK1. De plus, ce composé (10 μM) inhibe la phosphorylation de MYPT1 Ser445 ainsi que la migration, l'invasion et la prolifération cellulaires dans une mesure similaire à l'inactivation ("knock out") dans les MEF ou la réduction d'expression ("knock down") de NUAK1 dans les cellules U2OS. Il présente également une affinité élevée et spécifique pour l'EGFR mutant L858R/T790M, avec une IC50 cellulaire significativement réduite contre les cellules Ba/F3 contenant T790M.
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| Kinase Assay |
Détermination de l'IC50
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Les enzymes GST–NUAK1, GST–NUAK1[A195T] et GST–NUAK2 actives sont purifiées à l'aide de glutathion–Sépharose à partir de lysats de cellules HEK-293 36 à 48 h après la transfection transitoire de constructions mammaliennes pEBG2T exprimant les NUAK1, NUAK1[A195T] ou NUAK2 marquées GST N-terminal. Pour les essais de kinase peptidique, des plaques à 96 puits sont utilisées et chaque réaction est effectuée en triple. Chaque réaction est préparée dans un volume total de 50 μL contenant 100 ng de NUAK1 (type sauvage ou mutant A195T) ou de NUAK2 dans 50 mM Tris/HCl (pH 7,5), 0,1 mM EGTA, 10 mM acétate de magnésium, 200 μM Sakamototide, 0,1 mM [γ -32P]ATP (450–500 c.p.m./pmol) et les concentrations indiquées d'inhibiteurs dissous dans du DMSO. Après incubation pendant 30 min à 30°C, les réactions sont terminées par l'ajout de 25 mM (final) d'EDTA pour chélater le magnésium. Ensuite, 40 μL du mélange réactionnel sont déposés sur du papier P81 et immergés dans de l'acide orthophosphorique à 50 mM. Les échantillons sont lavés trois fois dans de l'acide orthophosphorique à 50 mM, suivis d'un rinçage unique à l'acétone et d'un séchage à l'air. L'incorporation de [γ -32P]ATP dans la Sakamototide est quantifiée par comptage Cerenkov. Les valeurs sont exprimées en pourcentage du contrôle DMSO. Les courbes d'IC50 sont développées et les valeurs d'IC50 sont calculées à l'aide du logiciel GraphPad Prism.
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Références |
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| Méthodes | Biomarqueurs | Images | PMID |
|---|---|---|---|
| Western blot | Tau-5 / p-tau (Ser356) |
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27720485 |
| Immunofluorescence | YAP/TAZ |
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30158528 |
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