alleen voor onderzoeksdoeleinden

Hoechst 33342 Dyes Chemisch

Cat.nr.: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) is een membraandoorlatende fluorescerende kleurstof die levende cellen kan kleuren. Deze verbinding bindt zich aan adenine-thymine-rijke gebieden van DNA in de kleine groef en verhoogt de fluorescentie aanzienlijk. Hierdoor kunnen de kern in interfase-cellen en chromosomen in mitotische cellen gemakkelijk worden gevisualiseerd.
Hoechst 33342 Dyes Chemisch Chemical Structure

Chemische structuur

Molecuulgewicht: 452.55

Spring naar

Kwaliteitscontrole (Quality Control)

Batch: Zuiverheid: 99.94%
99.94

Chemische informatie, opslag en stabiliteit (Chemical Information, Storage & Stability)

Molecuulgewicht 452.55 Formule

C27H28N6O

Opslag (vanaf de datum van ontvangst) 3 years -20°C powder
CAS-nr. 23491-52-3 -- Opslag van stamoplossingen

Synoniemen Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Oplosbaarheid (Solubility)

In vitro
Batch:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Met vocht verontreinigd DMSO kan de oplosbaarheid verminderen. Gebruik verse, watervrije DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molariteitscalculator

Massa Concentratie Volume Molecuulgewicht
Verdunningscalculator Molecuulgewichtcalculator

In vivo
Batch:

In vivo formulatiecalculator (heldere oplossing)

Stap 1: Voer onderstaande informatie in (Aanbevolen: een extra dier om rekening te houden met verlies tijdens het experiment)

mg/kg g μL

Stap 2: Voer de in vivo formulering in (Dit is alleen de calculator, geen formulering. Neem eerst contact met ons op als er geen in vivo formulering is in de sectie oplosbaarheid.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berekeningsresultaten:

Werkconcentratie: mg/ml;

Methode voor het bereiden van DMSO-moedervloeistof: mg geneesmiddel vooropgelost in μL DMSO ( Concentratie moedervloeistof mg/mL, Neem eerst contact met ons op als de concentratie de DMSO-oplosbaarheid van de batch van het geneesmiddel overschrijdt. )

Methode voor het bereiden van in vivo formulering: Neem μL DMSO moedervloeistof, voeg daarna toeμL PEG300, mengen en verhelderen, daarna toevoegenμL Tween 80, mengen en verhelderen, daarna toevoegen μL ddH2O, mengen en verhelderen.

Methode voor het bereiden van in vivo formulering: Neem μL DMSO moedervloeistof, voeg daarna toe μL Maïsolie, mengen en verhelderen.

Opmerking: 1. Zorg ervoor dat de vloeistof helder is voordat u het volgende oplosmiddel toevoegt.
2. Zorg ervoor dat u het/de oplosmiddel(en) in de juiste volgorde toevoegt. U moet ervoor zorgen dat de verkregen oplossing, bij de vorige toevoeging, een heldere oplossing is voordat u verdergaat met het toevoegen van het volgende oplosmiddel. Fysieke methoden zoals vortexen, ultrasoon of een warmwaterbad kunnen worden gebruikt om het oplossen te bevorderen.

Werkingsmechanisme (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Preparation of the stock solution
Dissolve 10 mg of Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Note: It is recommended to store the stock solution at 4℃ or -20℃ away from light and avoid repetitive freeze-thaw cycles.
1.2 Preparation of this compound working solution
Dilute the stock solution in serum-free cell culture medium or PBS to obtain final concentration 10 μg/mL this chemical working solution.
Note: Please adjust the concentration of this reagent working solution according to the actual situation.
1.Cell staining
2.1 Suspension cells(6-well plate)
a. Centrifuge at 1000 g at 4℃ for 3-5 minutes and then discard the supernatant. Wash twice with PBS, 5 minutes each time. The cell density is 1×106/mL.
b. Add 1 mL of working solution, and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
c. Centrifuge at 400 g at 4℃ for 3-4 minutes and then discard the supernatant.
d. Wash twice with PBS, 5 minutes each time.
e. Resuspend cells with serum-free cell culture medium or PBS. Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.
2.2 Adherent cells
a. Culture adherent cells on sterile coverslips.
b. Remove the coverslip from the medium and aspirate excess medium.
c. Add 100 μL of working solution, gently shake it to completely cover the cells,and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
d. Wash twice with medium, 5 minutes each time.Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.

Referenties